摘要 以壳聚糖(CS)和丙烯酸(AA)为原料、Zn为配位离子,采用紫外光照射法制备了CS-聚丙烯酸(PAA)/Zn复合网络水凝胶。通过FTIR、XRD、SEM 对样品进行了表征,考察了AA 与CS 上的氨基(—NH)物质的量比、Zn溶液加入量对CS-PAA/Zn溶胀能力、拉伸性能、细胞毒性和抗菌性能的影响。结果表明,CS-PAA/Zn复合网络水凝胶是以CS 链为主链,—NH 为第一位点交联较短的PAA 短链,减少了PAA 的生成,形成第一网络;PAA 短链上的—COOH 为第二位点,利用Zn的动态金属配位作用,形成第二网络。CS-PAA/Zn复合网络水凝胶存在较均匀、平整的外侧结构和富有管道空间及孔隙的内部结构;当使用1.0 g CS为原料、n (AA)∶n (—NH)=1.0∶1、0.01 mol/L 的Zn溶液加入量为4.0 mL 时,制备的CS-PAA/Zn复合网络水凝胶溶胀能力和拉伸能力最强,在pH=1 的溶液中,最大溶胀度为87.2%,断裂伸长率为331.265%,同时保持了较好的细胞(MDA-MB-231 细胞)活性与抗菌(大肠杆菌)性能,其细胞毒性低,细胞增殖率最低可达327.9%,具有良好的抗菌性能,添加Zn后抑菌圈直径最大可达5 mm。
关键词:
壳聚糖
水凝胶
复合网络
伤口敷料
低毒性
功能材料
壳聚糖(CS)是由甲壳素脱除 N -乙酰基得到的产物 [1] ,具有优异的生物可降解性 [2] 、生物相容性 [3-5] 和止血性能 [6] ,被广泛应用于生物医药的多种产业中 [7] ,例如:水凝胶敷料 [8] 、生物传感器 [9] 、人造骨骼 [10-11] 、细胞培养基 [12] 等,在其他行业也具有很大的应用潜力 [13] 。水凝胶是呈固体形态的三维聚合物网络 [14-15] 。当前,壳聚糖水凝胶的合成方法主要是自由基聚合法,其中,以光引发聚合 [16] 和添加交联剂的一锅法合成为主 [17] 。然而,添加交联剂的合成方法不可避免地会造成化学药剂的残留 [18-19] ,导致水凝胶对皮肤刺激性和细胞毒性的上升。而通过光引发聚合的方法不需要额外添加交联剂,在制备生物材料方面具有优势 [20-21] 。
ZHOU 等 [22] 通过壳聚糖与甲基丙烯酸乙二醇酯的Michael 加成反应制备了水溶性(甲基丙烯酰氧基)乙基羧乙基壳聚糖光交联大分子单体,将其用于制作组织工程支架。LIU 等 [23] 利用生物相容性光交联壳聚糖水凝胶膜,开发了一种甲硝唑控释葡萄糖敏感给药系统。在以往对CS-聚丙烯酸(PAA)水凝胶的研究中,研究人员使用大量的丙烯酸(AA) [24] 或以添加交联剂的方法 [25] 来保证水凝胶的物理性能,大量丙烯酸的添加会使壳聚糖本身卓越的生物相容性受限,水凝胶的性能极大地偏向聚丙烯酸为主体的单网络凝胶;而交联剂的使用会提高水凝胶的毒性,使其在伤口敷料上的应用受限。
本文拟通过紫外光自由基聚合的方法,制备以CS-PAA 网络为第一网络,PAA-Zn 2+ 络合网络为第二网络的低毒性复合网络水凝胶CS-PAA/Zn 2+ 。在聚合过程中,为避免聚丙烯酸单体的残留,降低水凝胶作为伤口敷料对皮肤的刺激性,采用尽可能少量的丙烯酸为原料来控制聚丙烯酸链的链长;引入具有杀菌作用的Zn 2+ 作为配位离子,利用动态金属配位作用来增强凝胶的物理特性,同时赋予其潜在的自愈合能力;并且,使用浸泡法制备脱水凝胶,可以有效增强凝胶的物理强度,获得可应用于伤口敷料领域的低毒性复合网络水凝胶,以期拓宽CS-PAA水凝胶的应用途径。
CS(数均相对分子质量 50000,脱乙酰度>70%)、丙烯酸,分析纯,天津市华东试剂厂;ZnSO 4 ·7H 2 O,化学纯,天津市化学试剂三厂;2-异丙基硫杂蒽酮(ITX),分析纯,巴斯夫化工有限公司;磷酸盐缓冲液(PBS,pH=6);L-15 培养基、MDA-MB-231 细胞、增强型细胞活力检测试剂盒(CCK-8),普诺赛生命科技有限公司;LB 肉汤培养基、琼脂粉、大肠杆菌固体培养基、大肠杆菌(编号:ATCC25922),生工生物工程(上海)股份有限公司。
Instron 5967 型万能试验机,英国Instron 公司;Nicolet iS5 型傅里叶变换红外光谱仪(FTIR),美国Thermo Fisher Scientific 公司;D8 Advance 型X 射线衍射仪(XRD),德国Bruker 公司;FEI QUANTA FEG250 型场发射扫描电子显微镜(SEM),美国FEI公司;550 型ELSA 平板读取器,德国ELSA 科技公司。
将1.0 g CS 加入到40 mL 质量浓度为1.1 g/mL 的丙烯酸水溶液中,丙烯酸与壳聚糖上的氨基(—NH 2 )物质的量比为1.0∶1。磁力搅拌3 h,盖上保鲜膜放置3 h 至均匀澄清。预先滴入4.0 mL 浓度0.01 mol/L 的Zn 2+ 溶液(由ZnSO 4 ·7H 2 O 配制),搅拌均匀后,滴入0.4 mL 0.786 mol/L 的光引发剂ITX 甲醇溶液,边滴边搅拌,得到乳白色的黏稠液体。以4000 r/min 转速离心去除气泡,得到预聚溶液。
水凝胶样品的制备:将预聚溶液放入样品管中,紫外灯(365 nm,1 kW)下光照15 min,得到以CS-PAA 网络为第一网络,PAA-Zn 2+ 络合网络为第二网络的低毒性复合网络水凝胶CS-PAA/Zn 2+ 。其合成路线如下所示:
固定丙烯酸水溶液体积为40 mL,保持0.01 mol/L Zn 2+ 溶液加入量4.0 mL,调整丙烯酸与1.0 g CS 上的氨基物质的量比为0.5∶1、1.5∶1、2.0∶1,其他条件不变,得到不同 n (AA)∶ n (—NH 2 )的CS-PAA/Zn 2+ 复合网络水凝胶;固定丙烯酸水溶液体积为40 mL,保持丙烯酸与1.0 g 壳聚糖上的氨基物质的量比为1.0∶1,调整滴入的浓度为0.01 mol/L 的Zn 2+ 溶液1.0、2.0、3.0、5.0、6.0 mL,其他条件不变,得到不同Zn 2+ 溶液加入量的CS-PAA/Zn 2+ 复合网络水凝胶。
固定丙烯酸水溶液体积为40 mL,未加入0.01 mol/L Zn 2+ 溶液,保持丙烯酸与1.0 g 壳聚糖上的氨基物质的量比为1.0∶1,制备得到CS-PAA 水凝胶。
如无特殊说明,后文表征和测试中,CS-PAA/Zn 2+ 复合网络水凝胶指的是在 n (AA)∶ n (—NH 2 )=1.0∶1、Zn 2+ 溶液加入量为4.0 mL 条件下制备的样品。
将水凝胶样品放入-20 ℃冰箱冷冻12 h 后,再在-50 ℃真空冻干48 h 进行FTIR、XRD、SEM、溶胀能力测试。
分别取1 mg 干燥的CS、冻干的CS- PAA 水凝胶和CS-PAA/Zn 2+ 复合网络水凝胶,在红外灯下与100 mg 干燥的KBr 充分研磨,然后将研磨好的粉末转移到洁净的压片磨具中制片,最后将制作的晶片进行FTIR 检测,波数范围4000~500 cm -1 。
分别取适量干燥的CS、冻干CS-PAA 水凝胶和冻干CS-PAA/Zn 2+ 复合网络水凝胶样品平铺在玻璃片上,置于XRD 内样品台上,待仪器稳定后扫描测试。测试条件为:Cu 靶K α 射线,管电压45 kV,管电流200 mA,扫描速率8 (°)/min,扫描范围2 θ =5°~80°。
用干净的药勺在冻干水凝胶表面及内部刮下碎末,均匀分散在导电胶上,表面喷Pt,通过SEM 观察记录样品形貌。
在培养皿中倒入适量0.1 mol/L 的PBS,用0.1 mol/L 的盐酸调节pH 为1。切取大小合适、质量为 m a (g)的冻干水凝胶放入培养皿溶液中,保证完全浸没。每5 min 取出,擦去表面水溶液,称量,记为 m b (g),重复操作直至溶胀平衡3 次。每组实验重复3 次,取平均值。根据式(1)计算最大溶胀度(SR max ):
重复上述实验,其他条件不变,分别用0.1 mol/L的NaOH 溶液或0.1 mol/L 盐酸调节PBS 缓冲液至pH 分别为3、5、7、9、11,计算不同pH 溶液浸泡的水凝胶的SR max 。
将水凝胶样品在去离子水中浸泡72 h,期间每隔24 h 换1 次水。利用凝胶内部和外部的极性差异排出凝胶内的水分,使凝胶收缩成白色橡胶条状,得到脱水收缩的水凝胶样品。使用带有500 N 负荷传感器的万能试验机对样品进行了机械测试,拉伸速率为10 mm/min。实验重复5 次。
将水凝胶样品按100 μL/孔铺于96 孔板,加入等量L-15 培养12 h,弃掉上清液,将MDA-MB-231细胞接种于凝胶表面,细胞密度5×10 4 个/mL,培养24 h。随后加入10 μL CCK-8,培养2 h。在ELSA平板读取器中用分光光度法(450 nm 波长)测量光密度(OD)。设置生理盐水为对照组,根据式(2)计算细胞增殖率(%):
称取2.5 g LB 肉汤培养基和100 mL 蒸馏水,在250 mL 试剂瓶中混合配制LB 液体培养基。重复上述操作,在LB 液体培养基中加入1.5 g 琼脂粉,配制LB 固体培养基。将LB 液体培养基和LB 固体培养基于高温高压蒸汽灭菌锅中121 ℃、15 min 灭菌后待用。待LB 液体培养基冷却至40~50 ℃,用电动移液器吸取15 mL 到一次性无菌平皿中。取两支12 mL 细菌培养管,各加入3 mL LB 液体培养基,从大肠杆菌固体培养基上挑取单菌落加入其中一支细菌培养管中,另一支作为空白对照。将两支细菌培养管放于恒温振荡器(37 ℃, 200 r/min)中振荡培养15 h,得到细菌悬液备用。取不同0.01 mol/L Zn 2+ 溶液加入量(分别为0、2.0、4.0 和6.0 mL)的CS-PAA/Zn 2+ 复合网络水凝胶,切成大小合适的小块,紫外灭菌30 min 备用。用无菌PBS 将制得的大肠杆菌悬液稀释至1×10 5 CFU/mL,然后吸取100 μL均匀涂布于LB 固体培养基上,用10 mm 打孔器打孔,取紫外灭菌完成的样品分别加至孔内,将添加大肠杆菌悬液和凝胶样品的LB 固体培养基放于恒温培养箱中37 ℃培养24 h。培养完成后取出,用普通相机拍照并测量记录抑菌圈大小,每组取3 个样品,结果取平均值。
水凝胶的溶胀能力对其在伤口敷料领域上的应用至关重要,其影响着水凝胶对伤口渗出液的吸收能力。 图1 为pH 对不同 n (AA)∶ n (—NH 2 )制备的CS-PAA/Zn 2+ 复合网络水凝胶最大溶胀度的影响。
从 图1 可以看出,随着pH 的增大,所有CS-PAA/Zn 2+ 复合网络水凝胶的SR max 均呈现减小并逐渐平稳或小幅回升的趋势,说明CS-PAA/Zn 2+ 复合网络水凝胶在酸性条件下具有较好的吸水能力。原因可能是,强酸条件下壳聚糖的游离氨基电离程度高,电荷斥力使凝胶内部空间增大,增强了吸水能力。随着pH 的升高,氨基电离程度降低,凝胶内部空间减小,溶胀能力减弱。而随着pH 的继续升高至碱性,羧基的电离程度增加,由于渗透压和电荷斥力的原因,凝胶溶胀能力回升。从 图1 还可以看出, n (AA)∶ n (—NH 2 )=1.0∶1 时,制备的CS-PAA/Zn 2+ 复合网络水凝胶具有最强的溶胀能力(pH=1 时,SR max =87.2%)。原因可能是, n (AA)∶ n (—NH 2 )=1.0∶1 时,丙烯酸的用量足够使壳聚糖链交联,凝胶结构稳定,具有较好的保水能力。而当 n (AA)∶ n (—NH 2 )增大时,丙烯酸用量的增加导致凝胶内部的羧基数量增加,过多的亲水羧基排列在凝胶外侧,疏水氨基在内侧,内外的极性差异使凝胶的吸水能力减弱。
作为伤口敷料,水凝胶的拉伸能力也很重要,因为人体运动时会对敷料产生拉扯使其伸长延展,而较好的拉伸能力能够保证其在被拉扯时不会断裂。 图2 为CS-PAA 水凝胶和Zn 2+ 溶液加入量为2.0、4.0 和6.0 mL 制备的CS-PAA/Zn 2+ 复合网络水凝胶的拉伸性能。
从 图2 可以看出,没有加入Zn 2+ 制备的CS-PAA水凝胶,断裂伸长率为106.228%,拉伸应力为0.045 MPa。随着Zn 2+ 溶液加入量的增加,CS-PAA/Zn 2+ 复合网络水凝胶断裂伸长率先升后降;当Zn 2+ 溶液加入量为 4.0 mL 时,断裂伸长率达到峰值,为331.265%;当Zn 2+ 溶液加入量增至6.0 mL 时,断裂伸长率降低至218.746%;而拉伸应力随着Zn 2+ 溶液加入量的增加而上升,最高达到0.129 MPa(Zn 2+ 溶液加入量为6.0 mL)。另外,从引入Zn 2+ 后的应力-应变曲线能观察到较为明显的“屈服成颈”现象,此现象说明,Zn 2+ 的加入在凝胶内部形成了第二种交联形式。其原因可能是,加入的Zn 2+ 和游离的羧基形成配位,使羧基成为第二交联位点,加强了凝胶的网状结构,进而增强了凝胶拉伸性能;而加入过量的Zn 2+ 后影响了自由基的聚合,使凝胶整体分子量降低 [25] ,导致拉伸能力下降。总之,Zn 2+ 的加入使凝胶的拉伸性能得到了极大的加强,这归功于Zn 2+ 的动态金属配位作用。
图3 为CS、CS-PAA、CS-PAA/Zn 2+ 的FTIR 谱图。
从 图3 可以看出,CS 在3500~3250 cm -1 处的吸收峰为—OH、—NH 2 的伸缩振动,而 CS-PAA 和CS-PAA/Zn 2+ 上此处的吸收峰明显减弱,原因是聚合后凝胶内部的氢键作用被大幅削弱;CS-PAA 在1750 cm -1 处的吸收峰归属于丙烯酸中的C==O 键的伸缩振动,CS 在此处不存在吸收,而CS-PAA/Zn 2+ 在此处的峰透过率明显减弱,说明Zn 2+ 的引入消耗了凝胶内部的羧基,与Zn 2+ 形成了配位;CS 中1640 cm -1 处的吸收峰为N—H 键的伸缩振动,而CS-PAA 和CS-PAA/Zn 2+ 中N—H 键的伸缩振动红移至1618 cm -1 , 且峰透过率明显减弱。 CS-PAA 和CS-PAA/Zn 2+ 在1450 cm -1 处C—N 键的吸收峰透过率比CS 强,这两处峰值的变化说明水凝胶内部的氢键作用被削弱,PAA 与CS 的结合位点在CS 中的—NH 2 上。1050 和1250 cm -1 两处的吸收峰归属于C—O—C 键的伸缩振动,3 种样品在此处均有吸收,且透过率无明显变化,说明聚合反应发生后CS链没有断裂,可以保持较大的相对分子质量。综上所述,CS 和PAA 成功通过离子相互作用力结合形成水凝胶,引入的Zn 2+ 与羧基形成配位,成功制备了CS-PAA/Zn 2+ 复合网络水凝胶。
图4 为CS、CS-PAA、CS-PAA/Zn 2+ 的XRD 谱图。
从 图4 可以看出,所有样品在2 θ =22°左右存在宽且钝的峰,说明所有样品都是无定形的,随着Zn 2+ 的引入,此峰强度减弱,且峰变宽,说明Zn 2+ 的加入降低了凝胶的结晶度,同时减弱了凝胶内部氢键的强度。这与FTIR 表征结果相互印证,证明Zn 2+ 确实参与了CS-PAA 水凝胶的交联,形成了以羧基和Zn 2+ 之间的配位键为主的交联网络,进而使凝胶内部的交联形式复杂化,结晶度降低。
图5 为CS-PAA/Zn 2+ 复合网络水凝胶在SEM 观察下外表面与斜截面的形貌。
从 图5 可以看出,CS-PAA/Zn 2+ 复合网络水凝胶具有较为平整且具有小孔隙的外层结构( 图5 a),这归因于CS-PAA/Zn 2+ 复合网络水凝胶外层的亲水性。CS-PAA/Zn 2+ 复合网络水凝胶内部具有大量的管道,斜截面呈现复杂的多孔形貌( 图5 b~d)。造成内外部形貌不同的原因来自于凝胶内外侧的极性差异,亲水性强的外侧形成均匀的凝胶壁,而内侧由于亲水性较弱,聚合时留在内部的水分在凝胶内侧蓄出较大的管道空间。与CS-PAA 水凝胶相比 [24] ,CS-PAA/Zn 2+ 复合网络水凝胶存在较为均匀平整的外侧结构,可以隔绝外部细菌;而富有管道空间及孔隙的内部结构可以吸收大量体液,适合作为水凝胶伤口敷料。
图6 为不同Zn 2+ 溶液加入量制备的CS-PAA/Zn 2+ 复合网络水凝胶细胞毒性测试结果。
从 图6 可以看出,与对照组相比,CS-PAA 水凝胶对细胞增殖有明显的促进作用,细胞增殖率达到509.0%;而随着Zn 2+ 溶液加入量的增加,细胞增殖率先降低后上升,当Zn 2+ 溶液加入量为4.0 mL 时制备的CS-PAA/Zn 2+ 复合网络水凝胶对细胞增殖的抑制能力最强,细胞增殖率最低,为327.9%。这是因为,逐渐升高的Zn 2+ 含量引发细胞线粒体损伤,导致细胞增殖率处于较低水平 [26] 。但与对照组相比,CS-PAA/Zn 2+ 复合网络水凝胶仍然显示出较高的细胞增殖率,细胞毒性低,表明CS-PAA/Zn 2+ 复合网络水凝胶对伤口愈合有促进作用。
图7 和 表1 为CS-PAA 和3 种CS-PAA/Zn 2+ 大肠杆菌的抗菌性能测试结果。
从 图7 与 表1 可以看出,CS-PAA 水凝胶具有一定的抗菌能力,但无法完全抑制大肠杆菌的生长,没有形成清晰、完整的抑菌圈;当引入Zn 2+ 后,CS-PAA/Zn 2+ 复合网络水凝胶具备了较好的抗菌效果,形成了清晰明显的抑菌圈,且抑菌圈直径随着Zn 2+ 水溶液加入量的增多而逐渐增大,最大可达5 mm。这主要归功于Zn 2+ 的抑菌能力。这表明CSPAA/Zn 2+ 复合网络水凝胶具有一定的抗菌能力,可以作为防止伤口细菌感染的材料进一步研究。
与以往研究 [27] 相比,本文制备CS-PAA/Zn 2+ 复合网络水凝胶减少了90%以上的丙烯酸用量,发挥壳聚糖水凝胶可降解性与生物相容性的优点,避免了化学交联剂的使用,降低了水凝胶的细胞毒性和皮肤刺激性。
(1)通过紫外光射法在常温下成功制备了CS-PAA/Zn 2+ 复合网络水凝胶。
(2)1.0 g 壳聚糖、 n (AA)∶ n (—NH 2 )=1.0∶1、0.01 mol/L 的Zn 2+ 溶液加入量为4.0 mL 制备的CS-PAA/Zn 2+ 复合网络水凝胶溶胀能力和拉伸能力最强,在pH=1 的溶液中,最大溶胀度87.2%,断裂伸长率331.265%,同时保持了较好的细胞(MDAMB-231 细胞)活性与抗菌(大肠杆菌)性能。
(3)制备CS-PAA/Zn 2+ 复合网络水凝胶减少了90%以上的丙烯酸用量,发挥壳聚糖水凝胶可降解性与生物相容性的优点,避免了化学交联剂的使用,降低了水凝胶的细胞毒性和皮肤刺激性。
CS-PAA/Zn 2+ 复合网络水凝胶制备方法简单,性能优异,生物相容性高,适合用作水凝胶敷料。